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酒酒球菌(Oenococcus oeni)耐酸突变株苹果酸-乳酸发酵能力...

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发表于 2019-7-7 19:35:13 | 显示全部楼层 |阅读模式
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酒酒球菌(Oenococcus oeni)耐酸突变株苹果酸-乳酸发酵能力分析酒酒球菌(Oenococcus oeni)耐酸突变株苹果酸-乳酸发酵能力分析
谢昉书1,文向圆1,刘树文1,2,3,*
(1.西北农林科技大学葡萄酒学院,陕西 杨凌 712100;2.陕西省葡萄与葡萄酒工程技术研究中心,陕西 杨凌 712100;3.陕西省合阳葡萄试验示范站,陕西 渭南 715300)
摘 要:目的:研究酒酒球菌(Oenococcus oeni)耐酸突变菌株的抗胁迫能力和苹果酸-乳酸发酵能力,为耐酸突变菌株开发为商业发酵剂提供参考。方法:以采用离子注入诱变,分离纯化后筛选出耐酸突变菌株b1为研究对象,酒酒球菌SX-1b和商业菌株31-DH为对照,探究单因素胁迫环境、复合因素胁迫条件及模拟酒环境对菌株b1生长能力、L-苹果酸降解速率和β-葡萄糖苷酶活性的影响,评价菌株b1的苹果酸-乳酸发酵能力。结果:单因素试验结果显示,当pH 3.0、乙醇体积分数14%、L-苹果酸质量浓度3 g/L时,菌株b1的L-苹果酸降解速率和β-葡萄糖苷酶活性均高于其余菌株;正交试验进一步确定各因素对菌株生长能力、L-苹果酸降解速率和β-葡萄糖苷酶活性的影响程度为:pH值>乙醇体积分数>L-苹果酸质量浓度;当模拟酒的乙醇体积分数为14%时,菌株b1的累积L-苹果酸降解量为1.493 2 g/L,分别为SX-1b与31-DH的1.41 倍和1.26 倍,且菌株b1的β-葡萄糖苷酶活性最高。结论:耐酸突变菌株b1表现出良好抗胁迫能力和苹果酸-乳酸发酵能力。因此,菌株 b1具有成为商业发酵剂的潜能。
关键词:酒酒球菌;生长能力;降酸;β-葡萄糖苷酶;苹果酸-乳酸发酵
苹果酸-乳酸发酵可以降低葡萄酒的酸度和色度,增加细菌学稳定性及改善葡萄酒的香气,因此,它是酿造优质葡萄酒的必需工艺环节[1]。在乙醇发酵结束之后葡萄酒的生境极其恶劣和复杂,低pH值、高乙醇体积分数和高SO2等均会抑制乳酸菌的生长和代谢,而酒酒球菌可以适应这种环境[2],因此,它成为苹果酸-乳酸发酵过程中重要的菌种[3-5]。
在苹果酸-乳酸发酵过程中,酒酒球菌可以将葡萄酒中具有酸涩感的L-苹果酸分解为L-乳酸,使葡萄酒更加柔和圆润。Bronwen等[6]研究发现,低pH值和高乙醇含量对植物乳杆菌的降酸能力起到抑制作用。葡萄酒的香气是衡量葡萄酒品质最为重要的指标之一[7]。萜烯类化合物具有浓郁的香味,是构成葡萄酒香气的主要物质,其主要以无味的糖苷结合态存在于葡萄酒中[6,8]。糖苷酶可以酶解香气前体物质以增加葡萄酒香气的复杂性,其中β-葡萄糖苷酶是改善葡萄酒香气的关键酶[9]。乳酸菌特别是酒酒球菌具有较高的β-葡萄糖苷酶活性,可以促进香气前体物的分解,对增加葡萄酒香气复杂性具有重要意义[10-13]。酒酒球菌对葡萄酒感官品质的影响具有菌株差异性[14-15],低pH值、高乙醇体积分数、高SO2环境都会对酒酒球菌的糖苷酶活性产生影响。因此,酒酒球菌在葡萄酒生境中的抗胁迫能力及糖苷酶的活性,直接影响苹果酸-乳酸发酵的启动、完成及葡萄酒的感官品质[16]。目前研究多是针对胁迫环境对酒酒球菌的降酸能力或β-葡萄糖苷酶活性的影响,但从酒酒球菌的生长能力、降酸能力和β-葡萄糖苷酶活性3 个方面评价其苹果酸-乳酸发酵能力的研究鲜少报道。
本研究通过分析单因素胁迫环境(pH值、乙醇体积分数和L-苹果酸)、复合因素胁迫环境和模拟酒环境对耐酸突变菌株[17]的生长能力、降酸能力和β-葡萄糖苷酶活性的影响,旨在全面评价耐酸突变菌株苹果酸-乳酸发酵的能力,为耐酸突变菌株成为商业发酵剂提供技术支撑。
1 材料与方法1.1 材料与试剂
1.1.1 菌种
苏轼“以诗为词”的词学理论是建立在“诗词同源”基础之上的,“清诗绝俗,甚典而丽。搜研物情,刮发幽翳,微词宛转,盖诗之裔”[3]。词为诗之苗裔,苏轼重点强调的是词如诗的主观抒情性、个性化的色彩,用以淡化词之媚俗,展现文人士大夫刚健清雅的精神境界,这就打破了词为艳科的藩篱,摆脱了音律对词的束缚,从而改革词风,扩大词境,促进词之雅化,提高词之品格。古往今来的论者,对“以诗为词”的褒扬者,其在自己所处时代的历史境遇内,皆是以诗词的相通之处——诗词均出自于《诗》、《骚》、古乐府,都能吟咏性情,皆可作为察政观俗的工具,词可寓诗人的句法[4]50为基点,进而对苏轼“以诗为词”理论的进行发扬。
酒酒球菌SX-1b[18]、商业菌株31-DH[19]保藏于西北农林科技大学葡萄酒学院;陈其玲等[17]对SX-1b进行离子注入诱变,经过分离纯化后筛选出的耐酸突变菌株b1。
1.1.2 培养基与试剂
ATB液体培养基(1 L):葡萄糖10 g,蛋白胨10 g,酵母浸粉5 g,MgSO4·7H2O 0.2 g, MnSO4·4H2O 0.05 g,盐酸半胱氨酸 0.5 g,番茄汁250 mL,pH 4.8。
模拟酒培养基(1 L):无水乙醇100 mL(培养基乙醇体积分数10%),葡萄汁10 g,L-苹果酸3 g,D-葡萄糖2 g,D-果糖2 g,CaCl2 0.13 g,KCl 0.45 g,(NH4)2SO4 1 g,CH3COONa 2 g,KH2PO4 0.6 g,MgSO4·7H2O 0.2 g,MnSO4 0.05 g,酵母浸粉4 g, pH 3.4。110 ℃灭菌10 min,待模拟酒培养基温度降至常温水平再添加100 mL无水乙醇。
对硝基苯酚-β-D-葡萄糖苷(p-nitrophenyl-β-D-glucopyranoside,p-NPG) 美国Sigma公司;L-苹果酸检测试剂盒 爱尔兰Megazyme公司;其他均为分析纯试剂。
1.2 仪器与设备
SW-CJ-1超净工作台 中国苏州安泰空气技术有限公司;SX-500高压蒸汽灭菌锅 日本Tomy公司;SHP-250生化培养箱 上海森信实验仪器有限公司;Cary60紫外分光光度计 安捷伦科技(中国)有限公司;Orion Star A111 pH计 美国Thermo Scientif i c公司。
1.3 方法
1.3.1 菌株的生长能力
1.3.1.1 菌株生长曲线绘制
将菌株于ATB液体培养基中26 ℃静置培养,活化2 次后以4%的接种量接种于单因素胁迫培养基中培养,绘制菌株生长曲线。
1.3.1.2 菌株生长量的测定
将菌株于ATB液体培养基中26 ℃静置培养,活化2 次后以4%接种量接种于正交条件的培养基中,测定OD600 nm,在26 ℃静置培养120 h后再次测定OD600 nm,以两次测定的差值(ΔOD600 nm)衡量实验菌株的生长。
信息技术为课堂教学也带来了创新型的革命,微课在学习中为课堂教学提供了有效的学习资源。但是,微课在课堂中的运用时机是否能够很好地把握,是否能够在课堂中高效地学习,仍然是微课教学所面临的主要问题和困难。加强课堂内学生自学微课环节的组织,让每一位学生在有效时间内认真观看微课内容,否则自学就流于形式[2]。
1.3.2 L-苹果酸含量的测定
按照L-苹果酸检测试剂盒的方法进行测定。
1.3.3 β-葡萄糖苷酶样品制备及活性测定
取对数生长中期(OD600 nm=1.0)菌液各1 mL,9 000 r/min离心10 min收集菌体,加入0.85% NaCl溶液洗涤2 次,并悬浮于0.5 mL 0.85% NaCl溶液。
情境教学是由著名教育学家李吉林于20世纪80年代初提出并实践的教学方法,其具体是指在课堂上利用恰当的情境调动学生的积极情绪,强调兴趣的培养,让学生变被动为主动的学习方法。情景教学提倡通过观察,不断积累形象,让学生在实际感受中获得认知,发展智力,可广泛应用于儿童教育的各个领域。
β-葡萄糖苷酶活力测定参照Barbagallo等[20]的方法并略作修改。反应体系(3 mL):在上述的悬浮液中加入0.5 mL的柠檬酸磷酸缓冲液和p-NPG混合液(pH 5.0,p-NPG浓度5 mmol/L),于37 ℃反应1 h,立即加入2 mL的1.0 mol/L Na2CO3溶液终止反应。10 000 r/min离心20 min,取上清液并使用全波长酶标仪测定400 nm波长处的吸光度。空白样品是使用0.85% NaCl缓冲溶液代替菌悬浮液,其他处理与样品相同。菌体干质量的计算如下式所示:
   
式中:A600 nm为菌液在600 nm波长处的吸光度;2.616 8为固定系数。
β-葡萄糖苷酶活力定义为以p-NPG为底物,每克菌体(干质量)每分钟水解该底物生成对硝基苯酚(p-nitrophenol,p-NP)的量(μmol/(g·min))。标准曲线由不同浓度(10~60 μmol/L)p-NP溶液在400 nm波长处比色获得。回归方程为y=0.008 6x+0.002 7,R2=0.999 4,线性关系良好,满足实验需求。
1.3.4 单因素胁迫环境对菌株抗胁迫能力的影响
1.3.4.1 pH值的影响
两夫妻淘汰了我在店内加点的小菜,偏偏那也是儿子们很喜欢的一样食材。“抱歉,菜单来不及画掉。这种食物大热天容易坏,我们不进货了,改为冻豆腐可以吗?”老板问。
将3 g/L的L-苹果酸添加到ATB液体培养基,并将培养基的pH值分别调节为3.0、3.2、3.4、3.6和3.8。以4%接种量接种于不同pH值的液体培养基中,测定生长曲线、L-苹果酸含量及β-葡萄糖苷酶活性。
1.3.4.2 乙醇体积分数的影响
将3 g/L的L-苹果酸添加到ATB液体培养基,并使培养基的乙醇体积分数分别为8%、10%、12%和14%,pH值为4.8,以4%接种量接种于含有不同乙醇体积分数的液体培养基中,测定生长曲线、L-苹果酸含量及β-葡萄糖苷酶活性。乙醇体积分数8%接近葡萄酒最低值7%,葡萄酒乙醇体积分数一般为10%~14%。
1.3.4.3 L-苹果酸的影响
将1、2、3、4 g/L的L-苹果酸分别添加到ATB液体培养基,pH值为4.8,以4%接种量接种于含有不同L-苹果酸质量浓度的液体培养基中,测定生长曲线、L-苹果酸含量及β-葡萄糖苷酶活性。
1.3.5 复合因素胁迫环境对菌株抗胁迫能力的影响
葡萄酒的高酸和高乙醇体积分数环境对酒酒球菌的生长和苹果酸-乳酸发酵具抑制作用,L-苹果酸是葡萄酒中重要的有机酸,对酒酒球菌的生长和降酸能力具有影响,因此,选择pH值、乙醇体积分数和L-苹果酸作为正交试验因素,采用L9(34)正交试验设计,确定正交试验因素影响程度及最优组合。
1.3.6 模拟酒环境下菌株的苹果酸-乳酸发酵能力
按照1.1.2节配制模拟酒培养基,并使模拟酒培养基的乙醇体积分数分别为10%、12%和14%,pH值为3.4,以4%接种量接种于模拟酒中,培养到一定时期,按照1.3.3节方法测定β-葡萄糖苷酶活性,并且每天按照1.3.2节方法测定L-苹果酸的含量。
1.4 数据处理
采用SPSS 20.0分析软件(上海卡贝信息技术有限公司)对实验结果进行分析。
2 结果与分析2.1 单因素胁迫环境对菌株抗胁迫能力的影响
2.1.1 pH值对菌株抗胁迫能力的影响
2.1.1.1 pH值对菌株生长能力的影响
     
图1 菌株SX-1b(a)、耐酸突变株b1(b)和商业菌株31-DH(c)在不同pH值条件下的生长曲线
Fig.1 Growth curves of SX-1b (a), b1 (b) and 31-DH (c) under different pH values

由图1可知,菌株SX-1b、b1和31-DH在稳定期的生长量随着pH值降低而降低,当pH值为3.0时,b1的生长量高于SX-1b和31-DH。在不同pH值条件下菌株的生长曲线可为之后L-苹果酸降解速率的测定提供时间依据。结果表明,pH值对菌株的生长具有抑制作用。但菌株b1在低pH值(3.0)下具有较强的生长能力。Tourdot-Maréchal等[21]研究发现,当pH值为3.2时,酒酒球菌的生长受到严重抑制。葡萄酒的pH值一般为3.0~3.4,酒酒球菌能否在葡萄酒的高酸环境中生长繁殖对苹果酸-乳酸发酵的启动具有重要意义。经过研究发现,低pH值将会引起酒酒球菌细胞膜结构和成分的变化,使菌株的生长受到抑制[22-23],但陈其玲等[17]采用离子注入诱变,分离纯化后获得的菌株b1表现出良好的抗酸胁迫能力,这有可能是离子注入诱变使与细胞膜结构有关的基因发生突变。
2.1.1.2 pH值对菌株L-苹果酸降解速率的影响
     
图2 pH值对L-苹果酸降解速率的影响
Fig.2 Effect of pH on the degradation rate of L-malic acid

将菌株接种于不同培养基培养120 h,测定L-苹果酸含量。当菌株的培养时间相同时,菌株的L-苹果酸降解量越高则其L-苹果酸降解速率越高。因此,以菌株在120 h时苹果酸的降解量表示L-苹果酸降解速率。由图2可知,菌株SX-1b、b1和31-DH的L-苹果酸降解量随着pH值降低而降低,即低pH值对菌株L-苹果酸降解速率具有抑制作用。当pH值为3.0时,b1保持较高的苹果酸降解量,为1.978 6 g/L,是SX-1b的1.34 倍,是31-DH的1.18 倍。
苹果酸乳酸酶是苹果酸-乳酸发酵过程中的关键酶[24],因此,其活性将会影响菌株L-苹果酸降解速率。研究发现,对于发酵速率较快的菌株,其苹果酸乳酸酶基因(mleA)的转录水平较高[25]。经过离子注入诱变,SX-1b的mleA可能发生突变,从而影响苹果酸乳酸酶活性和mleA的表达。
2.1.1.3 pH值对菌株β-葡萄糖苷酶活性的影响
     
图3 pH值对β-葡萄糖苷酶活性的影响
Fig.3 Effect of pH on β-glycosidase activity

以p-NPG为底物,在37 ℃条件下反应1 h,测定菌株SX-1b、b1和31-DH的β-葡萄糖苷酶活性。由图3可知,在不同pH值条件下,菌株SX-1b、b1和31-DH均具有β-葡萄糖苷酶活性,且β-葡萄糖苷酶活性具有菌株差异性,这与之前的研究结果基本一致[26-27]。菌株β-葡萄糖苷酶活性随着pH值降低而降低。当pH 3.0时,SX-1b和31-DH的β-葡萄糖苷酶活性受到强抑制作用,但b1受到的抑制作用较小,β-葡萄糖苷酶活性为8.610 0 μmol/(g·min),是SX-1b的6.64 倍,是31-DH的1.62 倍,这与陈其玲等[17]的研究基本一致。当pH 3.8时,SX-1b保持较高的β-葡萄糖苷酶活性。
大部分酒酒球菌β-葡萄糖苷酶的最适pH值为5.0[28],当pH值降到3.5时,β-葡萄糖苷酶活性急剧降低[20],且Michlmayr等[29]研究发现,在葡萄酒pH值(3.0~4.0)条件下,短乳杆菌β-葡萄糖苷酶活性很低,由此可知低pH值对菌株的β-葡萄糖苷酶具有抑制作用[20]。与杨芮等[28]研究结果相比较,菌株b1在低pH值条件下保持较高的β-葡萄糖苷酶活性。
2.1.2 乙醇体积分数对菌株抗胁迫能力的影响
2.1.2.1 乙醇体积分数对菌株生长能力的影响
     
图4 菌株SX-1b(a)、耐酸突变株b1(b)和商业菌株31-DH(c)在不同乙醇体积分数下的生长曲线
Fig.4 Growth curves of SX-1b (a), b1 (b) and 31-DH (c) at different alcohol concentrations

由图4可知,菌株SX-1b、b1和31-DH在稳定期的生长量随着乙醇体积分数增加而降低,即乙醇对各菌株的生长均具有强抑制作用。当乙醇体积分数为14%时,在稳定期生长量最高的为菌株b1。
2.1.2.2 乙醇体积分数对菌株L-苹果酸降解速率的影响
     
图5 乙醇体积分数对L-苹果酸降解速率的影响
Fig.5 Effect of alcohol concentration on the degradation rate of L-malic acid

由图5可知,菌株SX-1b、b1和31-DH的L-苹果酸降解量随着乙醇体积分数增加而降低,即乙醇对菌株L-苹果酸降解速率具有抑制作用。但b1的L-苹果酸降解量均高于其余菌株。当乙醇体积分数为14% 时,菌株b1的L-苹果酸降解量为1.717 7 g/L,分别是SX-1b和31-DH的1.36 倍和1.05 倍。
Miller等[30]研究发现,乙醇对植物乳杆菌mleA的表达具有抑制作用。Wang等[24]研究发现,当乙醇体积分数大于4% 时,随着乙醇体积分数的增加,酒酒球菌SD-2a的苹果酸乳酸酶活性显著降低。经过离子注入诱变,SX-1b的mleA发生突变,可能提高了菌株mleA的表达和苹果酸乳酸酶的活性。
2.1.2.3 乙醇体积分数对菌株β-葡萄糖苷酶活性的影响
     
图6 乙醇体积分数对β-葡萄糖苷酶活性的影响
Fig.6 Effect of alcohol concentration on β-glycosidase activity

由图6可知,菌株SX-1b、b1和31-DH的β-葡萄糖苷酶活性随着乙醇体积分数增加显著降低,这与之前的研究结果一致[20]。葡萄酒的乙醇体积分数一般为12%~14%,在该条件下,菌株b1保持较高的β-葡萄糖苷酶活性。当乙醇体积分数为14%时,β-葡萄糖苷酶活性最高的为菌株b1(1.597 5 μmol/(g·min)),分别是SX-1b和31-DH的1.09 倍和1.07 倍。
2.1.3 L-苹果酸对菌株抗胁迫能力的影响
2.1.3.1 L-苹果酸对菌株生长能力的影响
     
图7 菌株SX-1b(a)、耐酸突变株b1(b)和商业菌株31-DH(c)在不同L-苹果酸质量浓度下的生长曲线
Fig.7 Growth curves of SX-1b (a), b1 (b) and 31-DH (c) under different concentrations of L-malic acid

由图7可知,菌株SX-1b、b1和31-DH在稳定期的生长量随着L-苹果酸质量浓度增加而降低。当L-苹果酸质量浓度为3 g/L时,菌株b1在稳定期的生长量高于SX-1b和31-DH。
2.1.3.2 L-苹果酸对菌株L-苹果酸降解速率的影响
     
图8 L-苹果酸质量浓度对L-苹果酸降解速率的影响
Fig.8 Effect of L-malic acid concentration of on the degradation rate of L-malic acid

由图8可知,菌株SX-1b、b1和31-DH的L-苹果酸降解量随着L-苹果酸质量浓度增加而增加,即L-苹果酸对菌株的L-苹果酸降解速率具有促进作用。葡萄酒中L-苹果酸质量浓度一般为3 g/L,在此质量浓度下,L-苹果酸降解量最高的为菌株b1(2.846 9 g/L),分别是SX-1b和31-DH的1.19 倍和1.12 倍。
2.1.3.3 L-苹果酸对菌株β-葡萄糖苷酶活性的影响
     
图9 L-苹果酸质量浓度对β-葡萄糖苷酶活性的影响
Fig.9 Effect of L-malic acid concentration on β-glycosidase activity

由图9可知,菌株SX-1b、b1和31-DH的β-葡萄糖苷酶活性随着L-苹果酸质量浓度增加而降低。L-苹果酸对SX-1b和31-DH的β-葡萄糖苷酶活性抑制作用较强,对b1的β-葡萄糖苷酶活性抑制作用较小。当L-苹果酸质量浓度小于3 g/L时,菌株SX-1b和31-DH的β-葡萄糖苷酶活性较高,当L-苹果酸质量浓度大于3 g/L时,菌株b1表现出较高的β-葡萄糖苷酶活性。当L-苹果酸质量浓度为3 g/L时,菌株b1的β-葡萄糖苷酶活性高于其余菌株,为6.823 8 μmol/(g·min),分别是SX-1b和31-DH的1.16 倍和1.06 倍。
2.2 复合因素胁迫环境对菌株抗胁迫能力的影响
2.2.1 复合因素胁迫环境对菌株生长能力的影响
表1 正交试验条件对酒酒球菌ΔOD600 nm的影响
Table1 Orthogonal array design with ΔOD600 nm values of three Oenococcus oeni strains
     
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续表1
     
注:同列肩标小写字母不同表示差异显著(P<0.05)。下同。
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表2 ΔOD600 nm正交试验方差分析结果
Table2 Analysis of variance for the effect of variables on ΔOD600 nm
     
注:*.差异显著(P<0.05)。下同。
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由表1可知,ΔOD600 nm与单因素胁迫试验结果相差较大。pH值、乙醇体积分数和L-苹果酸对菌株的生长均具有抑制作用,因此,在3个胁迫因素协同作用下,对菌株生长的抑制作用将会显著增强。影响菌株生长因素的主次顺序均为pH值>乙醇体积分数>L-苹果酸质量浓度。由K值可以确定最优组合为A3B1C3,即pH 3.8、乙醇体积分数10%、L-苹果酸质量浓度4 g/L。
SPSS 20.0统计软件对试验结果进行方差分析,由表2可知,对于菌株b1,因素A和B有显著性差异(P<0.05)。对于菌株31-DH,因素A有显著性差异(P<0.05)。
2.2.2 复合因素胁迫环境对菌株L-苹果酸降解速率的影响
由表3可知,影响菌株SX-1b、b1和31-DH的L-苹果酸降解速率因素的主次顺序均pH值>乙醇体积分数>L-苹果酸。由K值可以确定最优组合为A3B1C3,即pH 3.8、乙醇体积分数10%、L-苹果酸质量浓度4 g/L。用SPSS 20.0统计软件对试验结果进行方差分析,由表4可知,因素A、B和C没有显著性差异。
表3 正交试验条件对L-苹果酸降解速率的影响
Table3 Orthogonal array design with L-malic acid degradation rates of three O. oeni strains
     
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表4 L-苹果酸降解速率正交试验方差分析结果
Table4 Analysis of variance for the effect of variables on L-malic acid degradation rate
     
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2.2.3 复合因素胁迫环境对菌株β-葡萄糖苷酶活性的影响
由表5可知,影响菌株SX-1b、b1和31-DH的β-葡萄糖苷酶活性因素的主次顺序均为pH值>乙醇体积分数>L-苹果酸质量浓度。由K值可以确定最优组合为A3B1C3,即pH 3.8、乙醇体积分数10%、L-苹果酸质量浓度4 g/L。用SPSS 20.0统计软件对试验结果进行方差分析,由表6可知,对于菌株31-DH,因素A有显著性差异(P<0.05)。
表5 正交试验条件对β-葡萄糖苷酶活性的影响
Table5 Orthogonal array design with β-glycosidase activity of three O. oeni strains
     
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表6 β-葡萄糖苷酶活性正交试验方差分析结果
Table6 Analysis of variance for the effect of variable on β-glycosidase activity
     
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2.3 模拟酒环境下菌株的苹果酸-乳酸发酵能力
2.3.1 模拟酒环境下菌株的L-苹果酸降解速率
     
图10 模拟酒中乙醇体积分数10%(a)、12%(b)和14%(c)条件下的L-苹果酸降解速率
Fig.10 Effect of alcohol concentration (10% (a), 12% (b) and 14% (c))of model wine on the degradation rate of L-malic acid

为进一步探究菌株b1的苹果酸-乳酸发酵能力,将生长至对数生长期(OD600 nm=1.0)菌株接种于含有不同乙醇体积分数(10%、12%和14%)的模拟酒中,在20 ℃培养12 d,每天测定L-苹果酸含量,以菌株的累积L-苹果酸降解量表示L-苹果酸降解速率。由图10可知,在模拟酒环境中,各菌株均具有L-苹果酸降解能力,随着乙醇体积分数的增加,菌株累积L-苹果降解量显著降低,即菌株L-苹果酸降解速率随着乙醇体积分数增加而降低。由图10c可知,当模拟酒的乙醇体积分数为14%时,菌株SX-1b和31-DH在模拟发酵初期受到严重的抑制作用,菌株b1受到的抑制作用较小,因此,菌株b1可以快速适应高乙醇体积分数的环境;当模拟发酵至第12天时,菌株b1累积L-苹果酸降解量最高,为1.493 2 g/L,分别是菌株SX-1b与31-DH的1.41 倍和1.26 倍。
2.3.2 模拟酒环境下菌株的β-葡萄糖苷酶活性
由图11可知,在模拟酒环境中,随着乙醇体积分数增加,各菌株β-葡萄糖苷酶活性均降低。在不同乙醇体积分数条件下,菌株b1的β-葡萄糖苷酶活性均高于SX-1b。当乙醇体积分数大于12% 时,菌株b1的β-葡萄糖苷酶活性较SX-1b和31-DH高。因此,在高乙醇体积分数的葡萄酒中,b1表现出较高的β-葡萄糖苷酶活性。
     
图11 模拟酒中乙醇体积分数对酒酒球菌β-葡萄糖苷酶活性的影响
Fig.11 Effect of alcohol concentration of model wine on β-glycosidase activity

结果表明,在模拟酒环境中,乙醇对菌株L-苹果酸降解速率和β-葡萄糖苷酶活性均具有抑制作用。当乙醇体积分数为14%时,菌株b1的L-苹果酸降解速率和β-葡萄糖苷酶活性均高于其余菌株,因此,耐酸突变菌株b1具有开发为商业发酵剂的潜能。
目前,在高校的课程设置中,针对大学生职业规划的课程较少,课程教学也相对流于形式。高校在肩负培养学生综合能力的同时,更应关注学生的职业规划和就业指导,帮助学生正确树立就业导向,构建科学的职业生涯规划,逐步改善当下毕业生“高不成,低不就”的就业心态,要将就业指导和职业规划融入日常教学和工作当中。
3 结 论
本研究通过对耐酸突变菌株b1生长能力、L-苹果酸降解速率和β-葡萄糖苷酶活性的研究发现,b1表现出良好抗胁迫能力和苹果酸-乳酸发酵能力,具有成为商业发酵剂的潜能。结果表明低pH值、高乙醇体积分数对菌株的生长能力、L-苹果酸降解速率和β-葡萄糖苷酶活性均具有抑制作用,L-苹果酸对其生长能力和β-葡萄糖苷酶活性具有抑制作用,对L-苹果酸降解速率具有促进作用。当单因素胁迫环境分别为pH 3.0、乙醇体积分数14%和L-苹果酸质量浓度3 g/L时,b1的L-苹果酸降解速率和β-葡萄糖苷酶活性均高于其余菌株。正交试验进一步确定各因素对菌株生长能力、L-苹果酸降解速率和β-葡萄糖苷酶活性的影响程度为:pH值>乙醇体积分数>L-苹果酸。当模拟酒的乙醇体积分数为14% 时,菌株b1的累积L-苹果酸降解量为1.493 2 g/L,分别是SX-1b与31-DH的1.41 倍和1.26 倍,且菌株b1的β-葡萄糖苷酶活性高于其余菌株。在后续的研究中,可将菌株b1接种于葡萄酒中进行苹果酸-乳酸发酵,进一步探究其L-苹果酸降解能力及其对葡萄酒香气的影响。
参考文献:
[1] PEREZ-MARTIN F, IZQUIERDO-CANAS P M, SESENA S, et al.Aromatic compounds released from natural precursors by selected Oenococcus oeni strains during malolactic fermentation[J]. European Food Research and Technology, 2015, 240(3): 609-618. DOI:10.1007/s00217-014-2361-2.
[2] MARGALEF-CATALA M, FELIS G E, REGUANT C, et al.Identif i cation of variable genomic regions related to stress response in Oenococcus oeni[J]. Food Research International, 2017, 102: 625-638.DOI:10.1016/j.foodres.2017.09.039.
[3] VIGENTINI I, PICOZZI C, TIRELLI A, et al. Survey on indigenous Oenococcus oeni strains isolated from red wines of Valtellina, a cold climate wine-growing Italian area[J]. International Journal of Food Microbiology, 2009, 136(1): 123-128. DOI:10.1016/j.ijfoodmicro.2009.09.009.
[4] YANAGIDA F, SRIONNUAL S, CHEN Y S. Isolation and characteristics of lactic acid bacteria from koshu vineyards in Japan[J].Letters in Applied Microbiology, 2008, 47(2): 134-139. DOI:10.1111/j.1472-765X.2008.02398.x.
[5] PAPAGIANNI M. Metabolic engineering of lactic acid bacteria for the production of industrially important compounds[J]. Computational and Structural Biotechnology Journal, 2012, 3(4): 1-7. DOI:10.5936/csbj.201210003.
[6] MICHLMAYR H, NAUER S, BRANDES W, et al. Release of wine monoterpenes from natural precursors by glycosidases from Oenococcus oeni[J]. Food Chemistry, 2012, 135(1): 80-87.DOI:10.1016/j.foodchem.2012.04.099.
[7] 张明霞, 吴玉文, 段长青. 葡萄与葡萄酒香气物质研究进展[J].中国农业科学, 2008, 41(7): 2098-2104. DOI:10.3864/j.issn.0578-1752.2008.07.030.
[8] MATEO J J, JIMENEZ M. Monoterpenes in grape juice and wines[J].Journal of Chromatography A, 2000, 881(1/2): 557-567. DOI:10.1016/S0021-9673(99)01342-4.
[9] 张春芝, 江志国. 微生物对葡萄酒香气的影响综述[J]. 中国酿造,2013, 32(9): 28-31. DOI:10.3969/j.issn.0254-5071.2013.09.008.
[10] GRIMALDI A, BARTOWSKY E, JIRANEK V. Screening of Lactobacillus spp. and Pediococcus spp. for glycosidase activities that are important in oenology[J]. Journal of Applied Microbiology, 2005,99(5): 1061-1069. DOI:10.1111/j.1365-2672.2005.02707.x.
[11] GAGNE S, LUCAS P M, PERELLO M C, et al. Variety and variability of glycosidase activities in an Oenococcus oeni strain collection tested with synthetic and natural substrates[J]. Journal of Applied Microbiology, 2011, 110(1): 218-228. DOI:10.1111/j.1365-2672.2010.04878.x.
[12] LI Y H, MA Y H, FAN M T, et al. Assessment of beta-D-glucosidase activity of intact cells of two Oenococcus oeni strains with synthetic and natural substrates[J]. Czech Journal of Food Sciences, 2016, 34(1):16-23. DOI:10.17221/216/2015-CJFS.
[13] UGLIANO M, MOIO L. The inf l uence of malolactic fermentation and Oenococcus oeni strain on glycosidic aroma precursors and related volatile compounds of red wine[J]. Journal of the Science of Food and Agriculture, 2006, 86(14): 2468-2476. DOI:10.1002/jsfa.2650.
[14] SOLIERI L, GENOVA F, DE PAOLA M, et al. Characterization and technological properties of Oenococcus oeni strains from wine spontaneous malolactic fermentations: a framework for selection of new starter cultures[J]. Journal of Applied Microbiology, 2010, 108(1):285-298. DOI:10.1111/j.1365-2672.2009.04428.x.
[15] FIA G, MILLARINI V, GRANCHI L, et al. Beta-glucosidase and esterase activity from Oenococcus oeni: screening and evaluation during malolactic fermentation in harsh conditions[J]. LWTFood Science and Technology, 2018, 89: 262-268. DOI:10.1016/j.lwt.2017.10.060.
[16] BRAVO-FERRADA B M, HOLLMANN A, BRIZUELA N, et al.Growth and consumption of L-malic acid in wine-like medium by acclimated and non-acclimated cultures of Patagonian Oenococcus oeni strains[J]. Folia Microbiologica, 2016, 61(5): 365-373.DOI:10.1007/s12223-016-0446-y.
[17] 陈其玲, 任晓宁, 王玲, 等. 酒酒球菌β-葡萄糖苷酶活性与耐酸胁迫能力的相关性分析[J]. 食品科学, 2017, 38(2): 115-120. DOI:10.7506/spkx1002-6630-201702019.
[18] JIN G, WANG H, ZHANG C H, et al. Characterization and amino acid metabolism performances of indigenous Oenococcus oeni isolated from Chinese wines[J]. European Food Research and Technology,2014, 238(4): 597-605. DOI:10.1007/s00217-013-2112-9.
[19] 杨世玲, 刘叶, 薛楚然, 等. 酒酒球菌β-葡萄糖苷酶基因克隆及生物信息学分析[J]. 中国食品学报, 2017, 17(7): 199-207. DOI:10.16429/j.1009-7848.2017.07.025.
[20] BARBAGALLO R N, SPAGNA G, PALMERI R, et al. Assessment of β-glucosidase activity in selected wild strains of Oenococcus oeni for malolactic fermentation[J]. Enzyme and Microbial Technology, 2004,34(3/4): 292-296. DOI:10.1016/j.enzmictec.2003.11.013.
[21] TOURDOT-MARECHAL R, FORTIER L C, GUZZO J, et al. Acid sensitivity of neomycin-resistant mutants of Oenococcus oeni:a relationship between reduction of ATPase activity and lack of malolactic activity[J]. Fems Microbiology Letters, 1999, 178(2): 319-326. DOI:10.1111/j.1574-6968.1999.tb08694.x.
[22] BETTERIDGE A, GRBIN P, JIRANEK V. Improving Oenococcus oeni to overcome challenges of wine malolactic fermentation[J].Trends in Biotechnology, 2015, 33(9): 547-553. DOI:10.1016/j.tibtech.2015.06.008.
[23] SUMBY K M, GRBIN P R, JIRANEK V. Implications of new research and technologies for malolactic fermentation in wine[J].Applied Microbiology & Biotechnology, 2014, 98(19): 8111-8132.DOI:10.1007/s00253-014-5976-0.
[24] WANG P X, LI A X, DONG M, et al. Induction, purification and characterization of malolactic enzyme from Oenococcus oeni SD-2a[J]. European Food Research and Technology, 2014, 239(5): 827-835. DOI:10.1007/s00217-014-2276-y.
[25] OLGUIN N, BORDONS A, REGUANT C. Multigenic expression analysis as an approach to understanding the behaviour of Oenococcus oeni in wine-like conditions[J]. International Journal of Food Microbiology, 2010, 144(1): 88-95. DOI:10.1016/j.ijfoodmicro.2010.08.032.
[26] GRIMALDI A, BARTOWSKY E, JIRANEK V. A survey of glycosidase activities of commercial wine strains of Oenococcus oeni[J]. International Journal of Food Microbiology, 2005, 105(2):233-244. DOI:10.1016/j.ijfoodmicro.2005.04.011.
[27] MANSFIELD A K, ZOECKLEIN B W, WHITON R S. Quantif i cation of glycosidase activity in selected strains of Brettanomyces bruxellensis and Oenococcus oeni[J]. American Journal of Enology &Viticulture, 2002, 53(4): 303-307.
[28] 杨芮, 吕珍, 文彦, 等. 酒类酒球菌中β-葡萄糖苷酶性质研究[J].食品科学, 2013, 34(23): 206-211. DOI:10.7506/spkx1002-6630-201323043.
[29] MICHLMAYR H, SCHUMANN C, DA SILVA N M B B, et al.Isolation and basic characterization of a beta-glucosidase from a strain of Lactobacillus brevis isolated from a malolactic starter culture[J].Journal of Applied Microbiology, 2010, 108(2): 550-559. DOI:10.1111/j.1365-2672.2009.04461.x.
[30] MILLER B J, FRANZ C M A P, CHO G S, et al. Expression of the malolactic enzyme gene (mle) from Lactobacillus plantarum under winemaking conditions[J]. Current Microbiology, 2011, 62(6): 1682-1688. DOI:10.1007/s00284-011-9914-4.

Malolactic Fermentation Ability of Acid-Tolerant Mutant Strain of Oenococcus oeni
XIE Fangshu1, WEN Xiangyuan1, LIU Shuwen1,2,3,*
(1. College of Enology, Northwest A&F University, Yangling 712100, China;2. Shaanxi Engineering Research Center for Viti-Viniculture, Yangling 712100, China;3. Heyang Experimental and Demonstrational Stations for Grape, Weinan 715300, China)
Abstract: Objective: This study aimed to evaluate the stress resistance and malolactic fermentation ability of an acidtolerance mutant strain of Oenococcus oeni for the purpose of providing a basis for the development of commercial wine fermentation starters. Methods: A acid-tolerant mutant b1, obtained by N+ ion implantation mutagenesis, was tested for the effect of various environmental stress factors and their combinations as well as wine-model conditions on its growth, L-malic acid degradation rate and β-glycosidase activity. Furthermore, we assessed the malolactic fermentation (MLF) ability of mutant b1. Results: The L-malic acid degradation rate and β-glycosidase activity of b1 were higher than those of the other strains under the conditions: pH 3.0, alcohol concentration of 14% and malic acid concentration of 3 g/L. pH had the greatest inf l uence on the growth, L-malic acid degradation rate and β-glycosidase activity of b1, alcohol concentration was in the middle, and L-malic acid concentration was least effective. When the alcohol concentration of the model wine was 14%,the L-malic acid consumption of strain b1 was 1.493 2 g/L, which was 1.41 and 1.26 times as high as that of O. oeni SX-1b and 31-DH, respectively, and it had the highest β-glucosidase activity. Conclusion: Acid-tolerant mutant b1 has good stress resistance and malolactic fermentation ability. Therefore, it has the potential to be used as a commercial starter .
Keywords: Oenococcus oeni; growth; deacidif i cation; β-glycosidase; malolactic fermentation






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