基于宏转录组学技术对豆酱中活菌群落分析方法的建立

奥鹏网院作业

基于宏转录组学技术对豆酱中活菌群落分析方法的建立基于宏转录组学技术对豆酱中活菌群落分析方法的建立

安飞宇1，武俊瑞1，尤升波2，解梦汐1，陈 旭1，赵 越1，包海燕1，乌日娜1,*

（1.沈阳农业大学食品学院，辽宁 沈阳 110866；2.山东省农业科学院生物技术研究中心，山东 济南 250100）

摘 要：基于宏转录组学技术建立分析自然发酵豆酱中活菌群落的方法，并对比分析豆酱在发酵初期和末期的活菌群落结构及功能。通过比较，确立在4 ℃、8 000 r/min离心5 min后弃上清液的样品预处理方法，其所提取的RNA质量浓度、纯度和总量更高。高通量测序结果表明，细菌在酱醪发酵阶段起主导作用，主要的细菌属为四联球菌属（Tetragenococcus）和乳杆菌属（Lactobacillus）。真菌仅在发酵初期有一定丰度，发酵末期时丰度很低。菌群功能主要集中在碳水化合物和氨基酸的代谢，且大多富集在发酵末期。研究结果在物种和功能层面上具有一致性，为揭示豆酱发酵过程中真正发挥作用的微生物和优良发酵菌种的选育提供新的研究方法和技术支持。

关键词：宏转录组学；豆酱；活菌；群落结构；功能注释

豆酱是以大豆和面粉为主要原料，经自然发酵而成的半流动状态发酵食品，在我国北方地区称为大酱[1]。传统自然发酵豆酱所具有的独特色、香、味、体是在各种微生物的共同作用下，通过诸多生化反应而形成的[2]，有研究表明，细菌、霉菌和酵母菌是豆酱发酵过程中的主要微生物[3]，这些微生物对于自然发酵豆酱品质的形成起到了极其重要的作用。

近年来，自然发酵豆酱中微生物群落结构在国内外得到广泛的关注和研究[4-6]，同时也发展了许多研究微生物群落结构和功能的技术[7]。研究方法先后经历了传统的平板培养法[8]、基于聚合酶链式反应-变性梯度凝胶电泳（polymerase chain reaction-denaturing gradient gel electrophoresis，PCR-DGGE）技术[9-10]、构建克隆文库和DNA测序等[11-12]。近年来，随着测序技术的不断进步及测序成本的逐渐降低，科学界开始越来越多地应用高通量测序技术研究发酵食品中的微生物群落[13]。但仅在DNA层面上的测序，如16S rRNA基因测序和宏基因组测序，其结果中有很大一部分是已经死亡的微生物，测序结果不能反映不同发酵阶段菌落的真实情况，对发酵过程中实际发生的代谢反应也只能是推测[14]，因此还需使用新技术对发酵体系中的活菌群落进行分析。

宏转录组学是后基因组时代最具代表性的新技术。宏转录组指的是在某个特定条件或时空，群落中所有微生物基因转录本的总和，可用于衡量微生物群落宏基因组的表达水平，筛选出高表达活性功能基因和微生物[15-16]。由于其是以微生物群落的总RNA为研究对象，因此宏转录组测序技术在一定程度上弥补了基因组测序结果存在死亡菌种干扰的这一缺陷，其结果只反映取样时体系中活菌的群落结构和相对丰度。近年来，宏转录组开始应用于如酸面团、干酪等发酵食品[17-19]，用于探索发酵食品中活菌的群落结构及功能，并通过分析各活菌群落在发酵过程中的代谢途径揭示其对风味的贡献，而由于自然发酵豆酱体系复杂，其总RNA的提取存在一定困难，目前鲜见有将宏转录组学技术应用于发酵豆酱的报道。

本实验基于宏转录组学技术对自然发酵豆酱初期和末期的两个样本进行活菌群落检测，建立了适用于豆酱这一复杂体系的总RNA提取方法，并对比分析了自然发酵豆酱在不同发酵时期的活菌群落结构及功能，以期为揭示豆酱发酵过程中真正发挥作用的微生物和优良发酵菌种的选育提供基本的技术支持，也可作为其他半固态发酵食品菌群分析的技术参考。

1 材料与方法1.1 材料与试剂

豆酱样品由辽宁省沈阳市辽中区一制酱经验丰富的农家提供。

RNA PowerSoil® Total RNA Isolation Kit美国Mobio公司；Ribo-Zero Magnetic Gold Kit 美国Epicentre公司；TruSeq Stranded mRNA LT Sample Prep Kit美国Illumina公司；High Sensitivity DNA Kit美国Agilent公司。

这老头子把傀儡坐在场中烈日下，一面拾着地面的莲蓬，用手捏着，探试其中的虚实，一面轻轻的咳着，调理他那副嗓子。他既无小锣，又无小鼓，除了那对脸儿一黑一白简陋呆板的傀儡以外，其余什么东西都没有！看的人也没有。

1.2 仪器与设备

NanoDrop分析仪 美国Thermo Scientific公司；琼脂糖凝胶电泳仪 北京市六一仪器厂；Centrifuge 5804R离心机 德国Eppendorf公司；2100生物分析仪 美国Agilent公司；HiSeq测序系统 美国Illumina公司。

1.3 方法

1.3.1 样品采集

样品取自辽宁省沈阳市辽中区一制酱经验丰富的农家，分别采集发酵第0天和第56天的豆酱样品于无菌灭酶管中，后续采用两种不同的样品前处理方式：1）采样后低温运输回实验室，4 ℃、8 000 r/min离心5 min，弃上清液，重复处理一次后再液氮速冻并转移至-80 ℃冰箱保存；2）采样时直接液氮速冻并转移至-80 ℃冰箱保存。

1.3.2 RNA提取与质检

采用RNA PowerSoil® Total RNA Isolation Kit，抽提总RNA，对抽提完成的RNA样品，进行1.5%琼脂糖凝胶电泳进行质量判断，要求RNA条带完整，无降解。利用紫外分光光度计对RNA进行定量。

1.3.3 宏转录组文库构建及测序

首先将rRNA序列特异性的探针与总RNA杂交，然后利用磁珠去除rRNA探针复合物，最后再用乙醇沉淀法进一步纯化mRNA。使用Illumina公司的TruSeq Stranded mRNA LT Sample Prep Kit试剂盒进行文库的构建。包括RNA片段化、cDNA合成、cDNA文库构建、PCR扩增已经加上接头的DNA片段、文库片段选择与纯化等步骤，各步骤遵照试剂盒生产商的操作指导完成。

用2100生物分析仪对文库进行质检，合格的文库应该有单一的峰，无接头。然后，在Promega QuantiFluor上对文库进行定量，合格的文库计算后浓度应在2 nmol/L以上。最后对合格的文库在Illumina HiSeq X-ten平台上进行2h150 bp的双端测序。将需要上机的文库梯度稀释，并按所需数据量比例混样。混好的文库变性成单链进行上机测序。

1.4 数据处理

首先对测序下机的原始数据进行筛查和过滤。质控后对每个样本的mRNA序列，分别采用Trinity进行从头组装拼接[20]。将样本序列与NCBI-NT数据库中的细菌、古菌、真菌和病毒序列进行BLASTN比对。运用MEGAN软件进行物种分类注释[21]。最后结合序列在各样本中的丰度数据，使用QIIME软件获得各样本在各个分类等级上的相对丰度分布表并绘制柱状图[22]。对各样本组装拼接后得到的所有转录本以0.95的相似度和0.9的最低覆盖度进行归并去冗余，并以最长的序列作为该Unigene的代表序列。将Unigene集与KEGG及CAZy数据库比对，从而对转录本功能进行注释分析。

2 结果与分析2.1 总RNA琼脂糖凝胶电泳分析

由于豆酱样品中的大豆经过高温高压蒸煮并长时间发酵，因此提取物中不含植物源RNA。此外，自然发酵豆酱体系复杂且处于开放式的发酵环境，豆酱中存在大量的核糖核酸酶，其会对总RNA的提取造成影响，使得从豆酱中提取RNA存在一定难度。因此与传统动植物组织及发酵食品总RNA提取方式[23-26]不同，本实验尝试不同的前处理方式，通过对总RNA抽提效果的比较建立最适用于豆酱这一复杂体系的总RNA提取方法。琼脂糖凝胶电泳检测结果如图1所示，不同前处理方式所获得的RNA质量有明显的差异。同时，不同发酵时期的总RNA提取效果也存在一定差异。

使用与满足理论认为受众基于心理或社会的需求，通过使用媒介来满足需求。受众的媒介接触行为取决于两个条件：媒介接触的可能性和媒介能否满足自己的需求[2]。目前，手机的普及率极高，人们可以便捷地通过手机使用微信公众号，这是微信公众号被广泛接受的基础。微信作为分享彼此观念和经验的社交平台,容易聚集价值观一致的群体。“咪蒙”的文章所传播出来的文化价值观念迎合了其粉丝的社会心理,不论是其吐槽、毒舌的文章,还是暖心、励志文章,都表现出对现实生活的关切和关怀,以及对纯真、美好、正能量的追求,戳中了当下年轻人的痛点和笑点，自然就吸引了大批的粉丝。

     

图1 两种不同前处理方式提取豆酱总RNA的电泳图
Fig. 1 Electropherograms of total RNA extracted from soybean paste by two different pretreatment methods

如图1所示，经过离心处理后的样品能得到23S、16S条带，条带清晰，无明显拖尾现象，且23S的亮度高于16S条带，说明经离心处理后提取的总RNA完整性较好，纯度较高，可用于后续实验；而未经离心处理的样品RNA条带相对较暗，尤其是发酵第0天条带拖尾严重，完整性较差，无法满足宏转录组建库要求。同时实验表明，发酵第0天的豆酱电泳条带亮度明显弱于发酵第56天，说明发酵初期豆酱所抽提的RNA浓度可能低于发酵末期。

2.2 总RNA质量分析

表1 RNA检测结果
Table 1 Quality evaluation of total RNA

     

注：a.离心处理；b.未离心处理。NA.无法得到此数据。

样品 质量浓度/（ng/μL）OD260 nm/OD280 nm值OD260 nm/OD280 nm值 RIN值H0（a） 30.45 1.90 0.81 7.4 H0（b） 294.51 2.04 1.69 NA H56（a） 44.68 2.08 0.99 7.8 H56（b） 21.21 2.11 0.60 7.9

使用2100生物分析仪检测RNA样品的纯度、质量浓度和完整性（表1）。除有明显拖尾的H0（b）外，样品通过离心处理所提取的RNA质量浓度较高，分别为30.45、44.68 ng/μL。该结果与琼脂糖凝胶电泳检测结果一致，说明发酵初期豆酱所抽提的RNA质量浓度低于发酵末期。其可能的原因为，在发酵第0天豆酱体系刚刚混入盐水，水分含量较高，并且发酵环境的巨大改变也可能会造成RNA降解。到发酵后期，豆酱水分含量降低且豆酱体系稳定，因此抽提相对容易。

纯度较好的RNA其OD260 nm/OD280 nm值应介于1. 8～2.0。若OD260 nm/OD280 nm值小于1.8，则表明多糖、蛋白和酚类物质较多，若OD260 nm/OD280 nm值大于2.0，则表明RNA有部分降解[23]。本实验各样品所抽提RNA的OD260 nm/OD280 nm值在1.90～2.11之间，其中通过离心处理的样品所抽提的RNA降解较少；而OD260 nm/OD280 nm值均低于1.0，说明可能仍有部分杂质残留，但不影响后续文库的建立。除未经离心处理的H0样品外，RNA完整数目（RNA integrity number，RIN）值均大于7，所提取的RNA完整性较好。检测结果表明，经离心处理提取的RNA质量浓度纯度和总量均符合转录组测序要求。

方案四：沿测区边界像控点布设方法与方案二相同，测区内旁向方向间隔两条航线布设一排像控点，航向方向像控点的布设与方案二相同。

构建以湟中县西堡镇为中心范围的21370hm2城市生态绿芯建设，打造成为一处自然生态净化功能大、推动城市转型升级带动力强的城市生态森林公园。筑牢以西宁南北山为生态屏障的城市生态屏障。加快湟水河、北川河、南川河三河六岸绿化，建设城市生态景观廊道。

2.3 测序数据统计及序列组装

宏转录组测序涉及到扩增环节的有两个步骤，一个是RNA反转录cDNA时的逆转录-PCR，一个是测序过程中的桥式PCR，均不具明显的扩增偏好性。同时，为保证后续分析质量可靠，对测序下机的原始数据进行筛查和过滤，获得可用于后续分析的有效序列集（Clean Data），并统计其占测序原始数据的比例。其结果如表2所示。去除低质序列后，各个样品的Clean Data获得率均在96%以上，Clean Reads获得率达到99%以上，数据质量足够满足分析需要。

2.识别性。基于导视系统的形象传递功能，其识别性的特点不言而喻。在进行高校导视系统的设计时，要考虑到各组成部分的视觉元素，即使用的标准色、字体、图形等元素是否符合高校已有的理念文化。同时要注意需有鲜明的特征，在体现其已有理念文化的基础上有极高的辨识度，使人轻易识记。

表2 测序数据统计
Table 2 Statistical analysis of sequencing data

     

编号Raw Data/bpClean Data/bpClean Data获得率/%样品Clean Reads获得率/%H0 11 569 939 516 11 179 322 071 96.62 99.28 H56 13 229 300 864 12 751 144 770 96.39 99.24

在得到高质序列后由Trinity软件进行拼接组装[19]，相应统计结果如表3所示，不同发酵时期豆酱分别获得154 922 条和22 552 条序列，且拼接效果良好。

表3 组装结果统计
Table 3 Statistics of assembly results

     

注：N50/N90长度越长，拼接效果越好，序列越完整。

样品 碱基总数 序列总数 N50 N90最长序列/bp最短序列/bp H0 74 053 662 154 922 536 241 75 336 200 H56 13 341 121 22 552 751 255 23 760 200

2.4 宏转录组物种注释和丰度分析

将样本序列与NCBINT数据库进行比对。使用Krona软件进行菌群分类学组成的交互展示[27]（图2），图中圆圈从内到外依次代表界、门、纲、目、科、属6 个分类水平，扇形的大小反映了不同分类单元的相对丰度高低。在每个分类水平，各单元以不同的颜色加以区分。

如图2所示，相对丰度最高的门类为厚壁菌门（Firmicutes）。发酵初期（H0）豆酱的活菌群落结构较为复杂，除厚壁菌门（81.6%）外，Mucoromycota（3.8%）和子囊菌门（Ascomycota，3.8%）为主要菌门。在发酵末期（H56）厚壁菌门（Firmicutes）占绝对优势，其相对丰度为99.0%。在属水平上，自然发酵豆酱的主要微生物菌属为四联球菌属（Tetragenococcus）、乳杆菌属（Lactobacillus）、葡萄球菌属（Staphylococcus）、太平洋海洋杆菌属（Oceanobacillus）和肠球菌属（Enterococcus），均为细菌菌属。在发酵初期，其活菌群落结构相对复杂，除相对丰度最高的四联球菌（Tetragenococcus，34.6%）外，还鉴定出大量的葡萄球菌属（Staphylococcus，24.9%），但随着发酵的进行，葡萄球菌属相对含量迅速降低，说明其可能为制酱初期所引入的杂菌，对豆酱的发酵作用影响不大。此外，在发酵初期有一定数量的真菌被检出，如根霉菌属（Rhizopus，3.06%）、曲霉菌属（Aspergilus，2.71%），但到了发酵末期，真菌菌属丰度大幅降低，自然发酵豆酱中活菌群落结构趋于稳定，主要的菌属为四联球菌属（Tetragenococcus，70.9%）和乳杆菌属（Lactobacillus，20.0%）。四联球菌属是促进健康的益生菌，它广泛存在于豆酱、酱油、鱼酱等发酵食品中，在改善豆酱风味方面具有重要作用[28]。有研究表明[29]，豆酱中的乳杆菌主要是植物乳杆菌，其不仅有利于食品的发酵，还可以改善食物的风味，且具有一定益生特性，包括维持肠道内菌群平衡、抑制肿瘤细胞的形成、降低血清胆固醇等[30]。此外，有部分序列被注释为病毒，但其相对含量极低，一些潜在致病菌如葡萄球菌属（Staphylococcus）也仅在发酵初期才有较高丰度，其含量会随着发酵时间的延长而降低，因此认为豆酱不具消费风险。本实验证明宏转录技术完全可以用于自然发酵豆酱活菌群落结构分析，而且此技术具有一定的敏感性，可以显示出豆酱发酵初期与末期间活菌群落的差异，同时也证明豆酱在自然发酵过程中微生物群落演替是一个逐渐趋于稳定的过程。

     

图2 基于Krona的分类学组成信息交互展示图
Fig. 2 Krona-based taxonomic composition information interactive display

2.5 宏转录组功能注释和丰度分析

2.5.1 KEGG功能注释

随着市场与消费者的不断革新，以及女性在社会文化中扮演着越来越重要的角色。 百达翡丽缔造出首款女式世界时间腕表——Ref.7130，采用中心带手工雕饰纹的蓝灰色表盘。24小时城市圆盘以及闪亮的孔雀蓝鳄鱼皮表带，在钻石的衬托下绽放优雅色调。将典雅高贵的品质与严苛的工艺美学演绎的淋漓尽致。

基于各Unigene在KEGG数据库中的功能注释结果，使用QIIME软件，获取各样本对应于KEGG数据库第1和第2功能等级的相对表达量分布，其结果如图3所示。在第1等级的代谢通路分类中（图3A），代谢表达量占比最高，达到总体表达量的35.9%。发酵0 d时，代谢功能占其总表达量的27.5%，后随着发酵的进行迅速升高，发酵第56天时，其相对表达量为44.2%。

     

图3 KEGG数据库相对表达量分布统计图
Fig. 3 KEGG database relative expression distribution statistics at (A)fi rst and (B) second levels

进一步对代谢通路子功能进行分析，如图3B所示，在第2等级的代谢通路分类中，碳水化合物代谢功能表达量占比最高，达到总体表达量的18.4%。在发酵第0、56天的相对表达量分别为12.0%和24.8%，这表明自然发酵豆酱菌群对淀粉具有较高的利用率。其中糖酵解/糖异生和TCA循环所注释到的表达量最高，分别为总体表达量的4.5%和3.7%。微生物可通过糖酵解途径将糖类分解成乙醇和二氧化碳[31]，其有助于豆酱的风味产生，因此在发酵后期该功能表达量升高。此外，氨基酸代谢功能表达量也相对较高，达到总体表达量的4.7%，在发酵第0天及第56天的相对表达量分别为3.4%和6.0%。该结果与其他组学研究结果一致[32-34]，说明宏转录技术可以用于分析自然发酵豆酱活菌群落功能。

诸暨市级便民服务体系主要以市公共服务中心为平台来搭建。市公共服务中心成立于2009年，通过整合原先分散在各部门和单位的行政职能和各种资源，分别构建了五个管理服务平台。其中，面向社会大众的是行政审批、应急指挥、社会服务三大平台，网络管理和效能监察两个平台则提供技术支撑和行政保障。

2.5.2 CAZy功能比较分析

根据KEGG数据库的对比结果发现自然发酵豆酱中的微生物活动大多与碳水化合物代谢有关，因此后续进行CAZy注释分析。基于不同发酵阶段样本在CAZy功能数据库中所注释到的相对表达量，可以比较它们在两样本间的倍数差异关系，从而评估各样本所分别富集的功能类群。如图4所示，除糖苷水解酶和糖基转移酶在H0中有略高表达量外，其他4 个功能类群包括碳水化合物结合模块、辅助氧化还原酶、碳水化合物酯酶以及多糖裂解酶均在H56中有较高的活性表达。

     

图4 CAZy蛋白模块比较分析图
Fig. 4 Comparative analysis of CAZy protein modules

微生物产生的糖基转移酶和糖苷水解酶能生成低聚糖。相关研究表明，发酵末期有机碳和可溶性糖含量都逐渐下降并保持恒定[35]，说明糖苷水解酶及糖基转移酶相关代谢反应已经基本完成。此外，由于在发酵前期盐浓度较高且含氧量较低，霉菌已经基本停止生长，但由霉菌分泌的各种酶类仍继续发挥作用[36]，而到了发酵末期，霉菌丰度极低，无法分泌相关酶类，这可能是发酵末期糖苷水解酶和糖基转移酶表达活性降低的主要原因。该结果也与宏转录组物种注释结果一致，再次印证宏转录技术可以用于分析自然发酵豆酱活菌群落结构及功能，且分析结果准确。

3 结 论

近年来，自然发酵豆酱中微生物群落结构及功能在国内外得到广泛的关注[4-6]，为反映自然发酵豆酱菌落的真实情况，免除传统分子生物学手段所带来的死亡菌群干扰，故尝试使用宏转录组学技术对豆酱发酵体系中的活菌群落进行分析。

1.2 实验动物和分组 选取清洁级雄性BALB/C小鼠18只，12周龄，由上海杰思捷实验动物有限公司提供。将小鼠随机分为3组，每组6只：对照组尾静脉注射生理盐水0.1 ml，脂多糖组尾静脉注射脂多糖5.0 mg/kg，激素组在脂多糖组基础上给予甲强龙4.8 mg/kg。

本实验首先对豆酱总RNA提取的前处理方法进行了对比研究，结果表明，与传统植物组织或发酵食品样品前处理方式不同[23-26]，对豆酱样品进行离心处理可以很好地解决复杂发酵体系对RNA提取的影响，这种样品前处理方式对发酵初期豆酱总RNA提取的帮助尤为明显。然后对豆酱活菌菌群结构及功能进行注释，根据NCBI的注释结果，以相对丰度不低于0.01为阈值，共鉴定出13 个属的15 种微生物，其中细菌占绝大多数，主要的细菌属为四联球菌属（Tetragenococcus）和乳杆菌属（Lactobacillus）。根霉菌属（Rhizopus）、曲霉菌属（Aspergilus）仅在发酵初期有较高丰度，其可能是由酱醅引入的，但随着发酵的进行，真菌丰度大幅降低，说明在酱醪发酵阶段，细菌为优势微生物，在发酵过程中起主导作用。其物种注释结果与先前报道可以相互印证[4,6,9-10]，证明宏转录技术完全可以用于自然发酵豆酱活菌群落结构分析，在显示出豆酱发酵初期与末期间活菌群落的差异的同时，也证明豆酱在自然发酵过程中微生物群落演替是一个趋于稳定的过程。在功能注释方面，通过KEGG功能注释和CAZy功能比较分析，发现自然发酵豆酱中微生物功能主要集中在碳水化合物和氨基酸代谢，其中在真菌丰度较高的发酵初期，糖苷水解酶和糖基转移酶相关代谢反应活性较高，该结果也与宏转录组物种注释结果一致，再次印证宏转录技术可以用于分析自然发酵豆酱活菌群落结构及功能，且具有良好的灵敏度及稳定性。将该技术与其他组学技术数据整合，将有利于挖掘出更多的有益菌株和潜在的功能基因应用于未来的工业生产，同时还可将该实验体系应用于其他半固态发酵食品的活菌群落分析。

参考文献：

[1] 辛星, 宋刚, 周晓杭, 等. 传统发酵豆酱中乳酸菌的分离、筛选及鉴定[J]. 中国食品学报, 2014, 14(9): 202-207. DOI:10.16429/j.1009-7848.2014.09.033.

[2] 姜静. 自然发酵豆酱微生物多样性及品质分析[D]. 沈阳: 沈阳农业大学, 2018.

[3] 牛天娇, 马莺. 中国传统发酵豆制品中微生物的发掘与利用[J]. 中国酿造, 2005, 24(2): 1-5. DOI:10.3969/j.issn.0254-5071.2005.02.001.

[4] SUN X D, LU G Z, LUAN Y S, et al. Analyses of microbial community of naturally homemade soybean pastes in Liaoning province of China by Illumina MiSeq sequencing[J]. Food Research International, 2018, 111: 50-57. DOI:10.1016/j.foodres.2018.05.006.

[5] WU J R, ZHANG J C, SHI P, et al. Bacterial community involved in traditional fermented soybean paste dajiang made in northeast China[J]. Annals of Microbiology, 2013, 63(4): 1417-1421.DOI:10.1007/s13213-013-0604-2

[6] 张颖, 乌日娜, 孙慧君, 等. 豆酱不同发酵阶段细菌群落多样性及动态变化分析[J]. 食品科学, 2017, 38(14): 30-35. DOI:10.7506/spkx1002-6630-201714005.

[7] 倪加加, 余育和, 胡合华. 钉螺体内细菌群落结构PCR-DGGE分析方法的建立[J]. 四川动物, 2010, 29(5): 546-549.

[8] KIM Y S, KIM M C, KWON S W, et al. Analyses of bacterial communities in meju, a Korean traditional fermented soybean bricks, by cultivation-based and pyrosequencing methods[J]. Journal of Microbiology, 2011, 49(3): 340-348. DOI:10.1007/s12275-011-0302-3.

[9] LEE J H, KIM T W, LEE H, et al. Determination of microbial diversity in meju, fermented cooked soya beans, using nested PCR-denaturing gradient gel electrophoresis[J]. Letters in Applied Microbiology, 2010,51(4): 388-394. DOI:10.1111/j.1472-765X.2010.02906.x.

[10] 樊敏, 胡萍, 陈仕梯, 等. 贵州大方豆酱中优势细菌种群分析与分离鉴定[J]. 中国酿造, 2016, 35(12): 25-30. DOI:10.11882/j.issn.0254-5071.2016.12.005.

[11] 安飞宇, 武俊瑞, 解梦汐, 等. 酱块发酵过程中真菌和细菌群落的演替[J]. 现代食品科技, 2018, 34(7): 61-67. DOI:10.13982/j.mfst.1673-9078.2018.7.010.

[12] LEE M H, LI F Z, LEE J, et al. Next-generation sequencing analyses of bacterial community structures in soybean pastes produced in northeast China[J]. Journal of Food Science, 2017, 82(4): 960-968.DOI:10.1111/1750-3841.13665.

[13] BOKULICH N A, LEWIS Z T, BOUNDY-MILLS K, et al. A new perspective on microbial landscapes within food production[J].Current Opinion in Biotechnology, 2016, 37: 182-189. DOI:10.1016/j.copbio.2015.12.008.

[14] 赵玲艳. 自然发酵辣椒微生物多样性及其宏转录组研究[D]. 长沙:湖南农业大学, 2017.

[15] 雷忠华, 陈聪聪, 陈谷. 基于宏基因组和宏转录组的发酵食品微生物研究进展[J]. 食品科学, 2018, 39(3): 330-337. DOI:10.7506/spkx1002-6630-201803049.

[16] 李晓晖, 李鑫鑫, 张维, 等. 宏转录组学在微生物生态学研究中的应用[J]. 中国农业科技导报, 2011, 13(4): 58-65. DOI:10.3969/j.issn.1008-0864.2011.04.09.

[17] STEFAN W, ROEL V M, JOKE A, et al. Community dynamics of bacteria in sourdough fermentations as revealed by their metatranscriptome[J]. Applied & Environmental Microbiology, 2010,76(16): 5402-5408. DOI:10.1128/AEM.00570-10.

[18] FILIPPIS F D, ALESSANDRO G, FERRANTI P, et al.Metatranscriptomics reveals temperature-driven functional changes in microbiome impacting cheese maturation rate[J]. Scientific Reports,2016, 6: 21871. DOI:10.1038/srep21871.

[19] STEFAN W, JOKE A, ROEL V M, et al. Metatranscriptome analysis for insight into whole-ecosystem gene expression during spontaneous wheat and spelt sourdough fermentations[J]. Applied and Environmental Microbiology, 2011, 77(2): 618-626. DOI:10.1128/AEM.02028-10.

[20] GRABHERR M G, HAAS B J, YASSOUR M, et al. Trinity:reconstructing a full-length transcriptome without a genome from RNA-Seq data[J]. Nature Biotechnology, 2011, 29(7): 644-652.DOI:10.1038/nbt.1883.

[21] HUSON D H, MITRA S, RUSCHEWEYH H J, et al. Integrative analysis of environmental sequences using MEGAN4[J]. Genome Research, 2011, 21(9): 1552-1560. DOI:10.1101/gr.120618.111.

[22] CAPORASO J G, KUCZYNSKI J, STOMBAUGH J, et al. QIIME allows analysis of high-throughput community sequencing data[J]. Nat Methods, 2010, 7(5): 335-336. DOI:10.1038/nmeth.f.303.

[23] 孟红岩, 郭莺, 林文珍, 等. 台湾牛樟总RNA提取方法的建立[J].亚热带植物科学, 2016, 45(1): 53-56. DOI:10.3969/j.issn.1009-7791.2016.01.011.

[24] 吕杰. 普洱茶不同发酵时期微生物群落宏转录组学研究[J].北京化工大学学报(自然科学版), 2012, 39(6): 84-89. DOI:10.3969/j.issn.1671-4628.2012.06.016.

[25] 生利霞, 孟祥毅, 王猛, 等. 淹涝处理下樱桃总RNA提取方法的建立与优化[J]. 上海农业学报, 2018, 34(2): 33-37. DOI:10.15955/j.issn1000-3924.2018.02.06.

[26] 尹珍珍, 陈发河, 吴光斌, 等. 莲雾果实高质量总RNA提取方法的建立[J]. 食品科学, 2015, 36(14): 1-4. DOI:10.7506/spkx1002-6630-201514001.

[27] ONDOV B D, BERGMAN N H, PHILLIPPY A M. Interactive metagenomic visualization in a Web browser[J]. BMC Bioinformatics,2011, 12: 385. DOI:10.1186/1471-2105-12-385.

[28] 王博, 周朝晖, 李铁桥, 等. 嗜盐四联球菌及其在发酵食品中的应用[J]. 食品与发酵工业, 2017, 43(8): 267-272. DOI:10.13995/j.cnki.11-1802/ts.014014.

[29] 武俊瑞, 张苗, 岳喜庆, 等. 黑龙江传统发酵豆酱中乳酸菌的分离鉴定[J]. 食品与发酵工业, 2014, 40(3): 83-86. DOI:10.13995/j.cnki.11-1802/ts.2014.03.001.

[30] COCKBURN A, BRAMBILLA G, FERNÁNDEZ M L, et al. Nitrite in feed: from animal health to human health[J]. Toxicology &Applied Pharmacology, 2013, 270(3): 209-217. DOI:10.1016/j.taap.2010.11.008.

[31] 宋潇. 米曲霉A100-8酿造黄豆酱的研究[D]. 天津: 天津科技大学,2014.

[32] 乌日娜, 薛亚婷, 张平, 等. 豆酱微生物宏蛋白质组提取及分析[J]. 食品科学, 2017, 38(14): 17-23. DOI:10.7506/spkx1002-6630-201714003.

[33] 武俊瑞, 顾采东, 田甜, 等. 豆酱自然发酵过程中蛋白质和氨基酸的变化规律[J]. 食品科学, 2017, 38(8): 139-144. DOI:10.7506/spkx1002-6630-201708022.

[34] 郑宇, 郑宇, 谢三款, 等. 中国传统发酵调味食品微生物功能分析与菌种选育技术[J]. 生物产业技术, 2017(1): 82-90. DOI:10.3969/j.issn.1674-0319.2017.01.013.

[35] 高秀芝, 王小芬, 李献梅, 等. 天源酱园豆酱发酵过程中营养及理化指标动态[J]. 食品科学, 2008, 29(9): 352-354. DOI:10.3321/j.issn:1002-6630.2008.09.079.

[36] 梁恒宇, 程建军, 马莺. 中国传统大豆发酵食品中微生物的分布[J]. 食品科学, 2004, 25(11): 401-404. DOI:10.3321/j.issn:1002-6630.2004.11.107.

Metatranscriptomic Analysis of the Microbial Community in Soybean Paste, a Traditional Chinese Fermented Condiment

AN Feiyu1, WU Junrui1, YOU Shengbo2, XIE Mengxi1, CHEN Xu1, ZHAO Yue1, BAO Haiyan1, WU Rina1,*
(1. College of Food Science, Shenyang Agricultural University, Shenyang 110866, China;2. Biotechnology Research Center, Shandong Academy of Agricultural Sciences, Jinan 250100, China)

Abstract: In the present study, we used metatranscriptomics to comparatively analyze the structure and function of the living bacterial community in naturally fermented soybean paste in the early and late stages of fermentation. We established that the purity and yield of extracted RNA could be increased by discarding the supernatant after centrifugation at 8 000 r/min for 5 min at 4 ℃ in the sample pretreatment procedure. High-throughput sequencing results showed that bacteria played a leading role in the fermentation of soybean paste, with the dominant genera being Tetragenococcus and Lactobacillus. Fungi were abundant only in the early stage of fermentation, and their abundance was low at the end of fermentation. The function of the bacterial community was mainly concentrated on the metabolism of carbohydrates and amino acids, and most of them were enriched at the end of fermentation. The results at the species and functional levels were consistent with each other.In summary, this study provides a new method and technical support for selecting excellent strains for the fermentation of soybean paste and for identifying the microorganisms that really play a role in the fermentation process.

Keywords: metatranscriptomics; soybean paste; viable bacteria; microbial community structure; functional annotation

收稿日期：2018-12-10

基金项目：国家自然科学基金面上项目（31972047）；辽宁省“百千万人才工程”人选科技活动支持项目；辽宁省“兴辽英才”青年拔尖人才支持计划项目（XLYC1807040）；沈阳市中青年科技创新人才支持计划项目（RC170212）

第一作者简介：安飞宇（1994ü）（ORCID: 0000-0002-4027-815X），男，硕士研究生，研究方向为食品生物技术。E-mail: anfeiyv@163.com

*通信作者简介：乌日娜（1979ü）（ORCID: 0000-0002-5846-0013），女，教授，博士，研究方向为食品生物技术。E-mail: wrn6956@163.com

DOI:10.7506/spkx1002-6630-20181210-126

中图分类号：TS201.3

文献标志码：A

文章编号：1002-6630（2020）04-0096-06

引文格式：安飞宇, 武俊瑞, 尤升波, 等. 基于宏转录组学技术对豆酱中活菌群落分析方法的建立[J]. 食品科学, 2020, 41(4):96-101. DOI:10.7506/spkx1002-6630-20181210-126. http://www.spkx.net.cn

AN Feiyu, WU Junrui, YOU Shengbo, et al. Metatranscriptomic analysis of the microbial community in soybean paste,a traditional Chinese fermented condiment[J]. Food Science, 2020, 41(4): 96-101. (in Chinese with English abstract)DOI:10.7506/spkx1002-6630-20181210-126. http://www.spkx.net.cn

该实验结果证实了已被污染的水质对水蚤心脏确实产生一定的影响。教学即将结束之时，教师可以进一步引导学生思考：在泛滥使用杀虫剂或者洗涤剂的当今社会，水质或者环境的改变对自然界其他的生物带来了怎样的不幸呢，长期使用残留洗涤剂的水果蔬菜对人类的身体健康是否有隐患呢……这些开放性问题可鼓励学生积极搜索课外资料对社会热点问题关注并讨论，从而在提高科学素养的同时进一步提高人文素养。